In vitro anthelmintic effect of aqueous extract of Croton blanchetiana leaf on sheep endoparasites
DOI:
https://doi.org/10.21527/2176-7114.2025.50.16453Palavras-chave:
sheep farming, small ruminants, parasites and phytotherapyResumo
The development of small ruminants has been hampered by infections related to gastrointestinal endoparasites. This problem arose due to the incorrect use of anthelmintics and inadequate management practices, which led to the emergence of parasite resistance. Given this, herbal medicine offers an alternative approach to parasite control. Among the various options, Croton blanchetianus stands out for its bioactive compounds and demonstrates antibacterial, antifungal, ectoparasiticidal and anthelmintic properties. Thus, the objective of this study was to evaluate the in vitro ovicidal activity of the aqueous extract derived from Croton blanchetianus leaves. For this, fecal samples were collected directly from the rectal ampulla of naturally infected animals, without administration of antiparasitics, for a period of 90 days. When the egg count per gram of feces exceeded 2,000 eggs, these eggs were collected for hatchability testing. Simultaneously, phytochemical analyzes were carried out on the leaves and toxicity tests on Artemia salina. The results revealed that the aqueous extract, at concentrations of 5 %, 2.5 %, 1.25 % and 0.625 %, presented hatching inhibition rates of 81.8 %, 70.0 %, 47.8 % and 40.4 %, respectively. Phytochemical analysis confirmed the presence of secondary metabolites in the extract. Furthermore, the toxicity test demonstrated that the C. blanchetianus extract was non-toxic to Artemia salina at all concentrations tested. Consequently, it can be concluded that the aqueous extract had inhibitory effects on egg hatching due to the presence of several secondary metabolites, thus increasing its potential as an anthelmintic treatment against gastrointestinal parasites in sheep.
Referências
1. Agne CL, Porto AR, Cavalheiro M. Perfil dos consumidores de carne ovina no município de Cachoeira do Sul – RS, Brasil. Rev. Grifos. 2021 Jun 14;30(53): 72-93. DOI: https://doi.org/10.22295/grifos.v30i53.5627
2. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Produção Agropecuária | IBGE [Internet]. www.ibge.gov.br. 2022 [cited 2022 May 30]. Available from: https://www.ibge.gov.br/explica/producao-agropecuaria/ovino/br
3. Naeem M, Iqbal Z, Roohi N. Ovine haemonchosis: a review. Trop. Anim. Health Prod. 2020 Nov 20;53(19):1-11. DOI: https://doi.org/10.1007/s11250-020-02439-8
4. Idris OA, Wintola OA, Afolayan AJ. Helminthiases; prevalence, transmission, host-parasite interactions, resistance to common synthetic drugs and treatment. Heliyon. 2019 Jan;5(1):e01161. DOI: https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01161
5. Jiao Y, Preston S, Garcia-Bustos JF, Baell JB, Ventura S, Le T, et al. Tetrahydroquinoxalines induce a lethal evisceration phenotype in Haemonchus contortus in vitro. Int Journal Parasitol: Drugs and Drug Resistance. 2019 Apr 1;9:59–71. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2018.12.007
6. Castro EMS, Souza EAR, Dantas ACS, da Silva IWG, de Araújo MM, de Azevedo SS, et al. Resistência parasitária de nematódeos gastrintestinais de caprinos criados em região semiárida de Pernambuco, nordeste do Brasil. Vet. Zootec (Botucatu). 2021 Mar 29;28(1):1-12. DOI: https://doi.org/10.35172/rvz.2021.v28.523
7. Aguiar KPA, Ramos LM, de Oliveira RAP, Guimarães CRR. Manejo sanitário de caprinos e ovinos. Rev Multidisc Nordeste Min. 2024;8(1). DOI: https://doi.org/10.35172/rvz.2021.v28.523
8. Cruz IR de L, de Andrade JF, Viana ALA, Pereira MF, Sales LB de O, do Nascimento AJB, et al. Controle fitoterápico e fúngico de parasitoses na criação de ruminantes. Braz J Dev [Internet]. 2023 May 9 [cited 2024 Sep 10];09(05). DOI:10.34117/bjdv9n5-069
9. Ferreira ET, dos Santos ES, Monteiro JS, Gomes M do SM, Menezes RA de O, de Souza MJC. A utilização de plantas medicinais e fitoterápicos: uma revisão integrativa sobre a atuação do enfermeiro / The use of medicinal and phytotherapy plants: an integrational review on the nurses 'performance. Braz J Health Rev. 2019 Feb 27;2(3):1511–1523.
10. Lima PR, Apdini T, Freire AS, Santana AS, Moura LML, Nascimento JCS, et al. Dietary supplementation with tannin and soybean oil on intake, digestibility, feeding behavior, ruminal protozoa and methane emission in sheep. Anim. Feed Sci Technol. 2019 Mar;249:10–7. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2019.01.017
11. Stucki K, Cero MD, Vogl CR, Ivemeyer S, Meier B, Maeschli A, et al. Ethnoveterinary contemporary knowledge of farmers in pre-alpine and alpine regions of the Swiss cantons of Bern and Lucerne compared to ancient and recent literature – Is there a tradition? J. Ethnopharmacol. 2019 Apr;234:225–244. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2018.12.022
12. Silva CR, da Silva NCS, Costa-Júnior LM, Nunes GS. Avanços no desenvolvimento de tecnologias utilizando óleos essenciais para controle de parasitos de pequenos ruminantes. Rev Gest Inov Tecnol.. 2019 May;9(2):4966–4976. DOI: 10.7198/geintec.v9i2.1265
13. Nunes AKA, Malveira EA, Andrade AL, da Silva WMB, de Morais SM, dos Santos HS, et al. Chemical Composition Determination and Evaluation of the Antimicrobial Activity of Essential Oil from Croton blanchetianus (Euphorbiaceae) against Clinically Relevant Bacteria. Chem Biodivers. 2022 Dec 21;20(1):e202200777. DOI: https://doi.org/10.1002/cbdv.202200777
14. Gomes AP de S, de Sales MF, de Melo AL. Novidades taxonômicas em Croton sect. Argyroglossum Baill. e C. sect. Lasiogyne Klotzsch (Crotonoideae-Euphorbiaceae). Acta Bot Bras. 2010 Dec 1;24(4):905–908. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-33062010000400004
15. Okokon JE, Nwafor PA. Antiinflammatory, analgesic and antipyretic activities of ethanolic root extract of Croton zambesicus. Pak J Pharm Sci. 2010 23 (4): 385-392. DOI:
16. Matos FJ de A, Machado MIL, Craveiro AA, Alencar JW, Barbosa JM, da Cunha EVL, et al. Essential Oil ofMenthaxvillosaHuds. from Northeastern Brazil. J Essent Oil Res. 1999 Jan;11(1):41–4. DOI: https://doi.org/10.1080/10412905.1999.9701066
17. Pinho-da-Silva L, Mendes-Maia PV, Garcia TM do N, Cruz JS, de Morais SM, Coelho-de-Souza AN, et al. Croton sonderianus essential oil samples distinctly affect rat airway smooth muscle. Phytomedicine. 2010 Aug 1;17(10):721–725. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phymed.2010.01.015
18. Nelson DL, Cox MM. Princípios de Bioquímica de Lehninger. Porto Alegre: Artmed; 2014.
19. Francisco M. Introdução à fitoquímica experimental. Fortaleza: Edições UFC; 2009.
20. Niciura SCM, Veríssimo CJ, Molento MB, editors. Determinação da Eficácia Anti-Helmintíca em Rebanhos Ovinos: Metodologia de Colheita de Amostras e de Informações de Manejo Zoossanitário [Internet]. São Carlos: Embrapa Pecuária Sudeste; 2009 Nov [cited 2021 Jan 15]. Available from: https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/infoteca/bitstream/doc/578348/1/PROCIDOC91SCMN2009.00152.pdf
21. Gordon HM, Whitlock HV. A New Technique for Counting Nematode Eggs in Sheep Faeces. 1939.
22. Hubert J, Kerboeuf D. A microlarval development assay for the detection of anthelmintic resistance in sheep nematodes. Vet Rec. 1992 May 16;130(20):442–446. DOI: https://doi.org/10.1136/vr.130.20.442
23. Coles GC, Jackson F, Pomroy WE, Prichard RK, Samson-Himmelstjerna G von, Silvestre A, et al. The detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance. Vet Parasitol [Internet]. 2006 Mar 31;136(3-4):167–85. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.11.019
24. Meyer B, Ferrigni N, Putnam J, Jacobsen L, Nichols D, McLaughlin J. Brine Shrimp: A Convenient General Bioassay for Active Plant Constituents. Planta Med. 1982 May;45(05):31–4. DOI: 10.1055/s-2007-971236
25. Osório TM, Menezes L de M, Rosa KB, Escobar RF, Lencina RM, Maydana G de M, et al. Resistência anti-helmíntica em nematódeos gastrointestinais na ovinocultura: uma revisão. Braz J Dev. 2020;6(11):89194–89205.DOI: https://doi.org/10.34117/bjdv6n11-368
26. Kaplan RM. Biology, Epidemiology, Diagnosis, and Management of Anthelmintic Resistance in Gastrointestinal Nematodes of Livestock. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2020 Mar;36(1):17–30. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2019.12.001
27. Vanessa Daniele Mottin, Mottin VD, da Cruz JF, Neto MRT, Marisco G, Figueredo JS, et al. Efficacy, toxicity, and lethality of plants with potential anthelmintic activity in small ruminants in Brazil. Rev Bras Saúde Prod Anim. 2019 Jan 1;20:01-23.DOI: https://doi.org/10.1590/S1519-9940200232019
28. Krychak-Furtado S, Negrelle RB, Miguel OG, Zaniolo SR, Kapronezai J, Ramos SJ, et al. Efeito de Carica papaya L. (Caricaceae) e Musa paradisiaca Linn. (Musaceae) sobre o desenvolvimento de ovos de nematódeos gastrintestinais de ovinos. Arq Inst Biol. 2005 Apr;72(2):193–9. DOI: https://doi.org/10.1590/1808-1657v72p1932005
29. Castro, L. M., Pinto, N. B., de Moura, M. Q., Freitag, R. A., et al. In vitro activity of the essential oil of Cuminum cyminum against Haemonchus contortus of sheep. Braz J Dev. 2021;7(5):44079–91. DOI: 10.34117/bjdv.v7i5.29188.
30. Oliveira, A. G. N., Capello, A. B. T., da Silva Sunada, N., & Fraga, T. L. ecnologia para produção de extrato aquoso de folhas da planta Solanum lycocarpum para avaliação da eficiência anti-helmíntica: validação da técnica de inibição da eclodibilidade larval de helmintos de ovinos. Vet e Zootec. 2022;29:1-7. DOI: https://doi.org/10.35172/rvz.2022.v29.675.
31. Santos TFB dos, Souza AM de, Rodrigues WB, Barata J da S, Oliveira ACP de, Amorim SL de. Atividade anti-helmíntica do extrato etanólico das folhas da Arrabidae chica sobre ovos e larvas de nematódeos gastrintestinais de ovinos. Sci Nat. 2021;3(1):172–8. DOI: https://doi.org/10.29327/269504.3.1-16
32. Liu Y, Qi Y, Chen X, He H, Liu Z, Zhang Z, et al. Phenolic compounds and antioxidant activity in red- and in green-fleshed kiwifruits. Food Res Int [Internet]. 2019 Feb 1;116:291–301. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2018.08.038
33. Marcucci MC, Salatino A, de Magalhães Oliveira LFA, Gonçalves CP. Metodologias Acessíveis para a Quantificação de Flavonoides e Fenóis Totais em Própolis. Rev Virtual Quím. 2021;13(1):1–13.
34. John J, Mehta A, Shukla S, Mehta P. A report on anthelmintic activity of Cassia tora leaves. Songklanakarin J Sci Technol. 2009 Aug 1;31(3).
35. Pineda CO, Temesgen TT, Robertson LJ. Multiplex Quantitative PCR Analysis of Strawberries from Bogotá, Colombia, for Contamination with Three Parasites. J Food Prot. 2020 May 18;83(10):1679–84. DOI: https://doi.org/10.4315/JFP-20-121.
36. Olmedo-Juárez A, Zarza-Albarran MA, Rojo-Rubio R, Zamilpa A, González-Cortazar M, Mondragón-Ancelmo J, et al. Acacia farnesiana pods (plant: Fabaceae) possesses anti-parasitic compounds against Haemonchus contortus in female lambs. Exp Parasitol. 2020 Nov 1;218:107980. DOI: https://doi.org/10.1016/j.exppara.2020.107980
37. Mercês ZC, Santos JCDM. COMPOSTOS BIOATIVOS - FLAVONOIDES. 2023 Mar 6 [cited 2024 Sep 12];1–12. Available from: https://arqcientificosimmes.emnuvens.com.br/abi/article/view/548
38. Silva AI, Sá-Filho G, Oliveira L, Guzen F, Cavalcanti J, Cavalcante J. Perfil fitoquímico de extratos etanólicos e metanólicos do Croton blanchetianus. Rev Bras Multidiscipl. 2021 Apr 22;24(1):134–42. DOI: https://doi.org/10.25061/2527-2675/ReBraM/2021.v24i1.1057
39. Teshome E, Forsido SF, Rupasinghe HPV, Keyata EO. Potentials of Natural Preservatives to Enhance Food Safety and Shelf Life: A Review. Sci World J. 2022 Sep 23;2022(1):9901018. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/9901018
40. Martins ACR, da Costa JKN, Herbert A, Farias FRS, Rezende M, Junior VAK, et al. Avaliação da toxicidade das tinturas de aroeira e de romã através do bioensaio com Artemia salina. Res Soc Dev. 2021 Mar 24;10(3):e52010313751-e52010313751.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2025 Revista Contexto & Saúde
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Autores que publicam na Revista Contexto & Saúde concordam com os seguintes termos:
a) A submissão de trabalho(s) científico(s) original(is) pelos autores, na qualidade de titulares do direito de autor do(s) texto(s) enviado(s) ao periódico, nos termos da Lei 9.610/98, implica na cessão de direitos autorais de publicação na Revista Contexto e Saúde do(s) artigo(s) aceitos para publicação à Universidade Regional do Noroeste do Estado do Rio Grande do Sul, autorizando-se, ainda, que o(s) trabalho(s) científico(s) aprovado(s) seja(m) divulgado(s) gratuitamente, sem qualquer tipo de ressarcimento a título de direitos autorais, por meio do site da revista e suas bases de dados de indexação e repositórios, para fins de leitura, impressão e/ou download do arquivo do texto, a partir da data de aceitação para fins de publicação. Isto significa que, ao procederem a submissão do(s) artigo(s) à Revista Contexto e Saúde e, por conseguinte, a cessão gratuita dos direitos autorais relacionados ao trabalho científico enviado, os autores têm plena ciência de que não serão remunerados pela publicação do(s) artigo(s) no periódico.
b). Autores mantém os direitos autorais e concedem à revista o direito de primeira publicação, com o trabalho simultaneamente licenciado sob a Licença Creative Commons Attribution que permite o compartilhamento do trabalho com reconhecimento da autoria e publicação inicial nesta revista.
c). Autores têm autorização para assumir contratos adicionais separadamente, para distribuição não-exclusiva da versão do trabalho publicada nesta revista (ex.: publicar em repositório institucional ou como capítulo de livro), com reconhecimento de autoria e publicação inicial nesta revista.
d). Autores têm permissão e são estimulados a publicar e distribuir seu trabalho online (ex.: em repositórios institucionais ou na sua página pessoal) a qualquer ponto antes ou durante o processo editorial, já que isso pode gerar alterações produtivas, bem como aumentar o impacto e a citação do trabalho publicado (Veja O Efeito do Acesso Livre).
